タンパク質結晶化条件スクリーニング用の分注装置
Gryphonシリーズ

タンパク質のX線構造解析では、良質な結晶を得られるかが、実験の成功と失敗を大きく左右します。すなわち、良質な結晶を作ることができれば、その他のタンパク質立体構造解析法を凌駕する質の高い（解像度の高い）立体構造データを得ることができます。

タンパク質はタンパク質ごとに適した結晶化条件が異なるため、X線構造解析を行う前に、最適な条件を見つける必要があります。とりわけ、タンパク質ごとに異なる至適な結晶化試薬組成を探すことが大切です。

通常、結晶化条件の検討は、初期スクリーニングと最適化の2段階（あるいは複数段階）で行われます。

初期スクリーニングでは、市販の結晶化試薬スクリーニングキット（例：Sparse-Matrix Screen Kit）を用いて、解析対象となるタンパク質を結晶化できる大まかな試薬条件を探し出します。タンパク質結晶化では、極めて高濃度なタンパク質溶液を必要とし、一般に使えるサンプル量が限られることから、多くの条件をテストするには、結晶化プレートに極めて微量なタンパク質（あるいはLCP法の場合は脂質と混合させたタンパク質）を分注する必要があります。

また、極微量であるが故に、プレート内のドロップ液がインキュベーション前に蒸発するのを防ぐために迅速な作業が求められます。

通常は下記の順番で分注作業が行われます。

1.  結晶化試薬を96チャンネルシリンジに吸引する。
2.  冷却した精製タンパク質溶液をナノノズルに吸引する。
3.  結晶化試薬を結晶化プレートのリザーバーウェルに分注する。
4.  続けて微量の結晶化試薬をサンプルウェルにディスペンスする。
5.  タンパク質溶液をサンプルウェルにディスペンスする。
6.  96チャンネルシリンジとナノノズルを洗浄する（動画外）。

※ ハンギングドロップ法にも対応しています。詳細はお問い合わせください。

1.  LCPをミックスしたLCPシリンジを装着する（動画外）。
2.  結晶化試薬（沈殿剤）を96チャンネルシリンジに吸い取る。
3.  LCP溶液をディスペンスする。
4.  結晶化試薬をディスペンスする。
5.  96チャンネルシリンジを洗浄する（動画外）。

※ Art Robbins社のLCPミキサーの動画は こちら。

※ LCPシリンジのセットアップ法の動画は こちら。